微生物发酵工程实验



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1、Click to edit Master text styles,,Second level,,Third level,,Fourth level,,Fifth level,,*,Click to edit Master title style,,微生物发酵工程实验,,,,2010-11,1,实验内容,实验一 机械搅拌发酵系统结构与控制系统,,实验二 中试搅拌发酵罐的使用与维护,,实验三 培养基的分批灭菌,,实验四 磷细菌高密度发酵,,实验五 喷雾干燥,2,,时间安排,11,月,8,、,9,、,12,日下午,熟悉发酵罐系统。,,,11,月,15,日周一,单因子实验,优化磷细菌发酵培养
2、基的碳源。,,11,月,16,日周二下午,,,单因子实验,优化磷细菌发酵培养基的碳源。(完成系列稀释、涂布,发酵液还原糖测定),,发酵罐开盖,清洗。,,磷细菌种子制备,3,,11,月,17,日周三上午,发酵系统启动,,pH,电极标定,溶氧电极标定,发酵培养基配制、装罐。,,周三下午,培养基分批灭菌。灭菌培养基取样、无菌检查。,,周三晚上,种子无杂菌检查。接种,上罐,发酵控制,接种后取样测定(细菌数量、,pH,、还原糖等)。,,周三晚上,夜班,关注发酵控制参数,,4,,周四上午,取样测定(细菌数量、,pH,、还原糖、杂菌率等),,周四下午,取样测定(细菌数量、,pH,、还原糖、杂菌率等),,,周
3、五上午,放罐,清洗发酵罐;计数摇瓶实验结果,,周五下午,喷雾干燥。,5,,优化磷细菌发酵培养基的碳源(单因子实验),菌种:无机磷细菌,,培养基,,发酵培养基,A,:可溶性淀粉,0.6%,,硫酸铵,0.5%,,硫酸镁,0.06%,,磷酸氢二钾,0.1%,,酵母粉,0.05%,,,pH 7.0-7.5,,发酵培养基,B,:葡萄糖,0.2%,,可溶性淀粉,0.4%,,硫酸铵,0.5%,,硫酸镁,0.06%,,磷酸氢二钾,0.1%,,酵母粉,0.05%,,,pH 7.0-7.5,,发酵培养基,C,:葡萄糖,1%,,硫酸铵,0.5%,,硫酸镁,0.06%,,磷酸氢二钾,0.1%,,酵母粉,0.05%,,
4、,pH 7.0-7.5,,发酵培养基,D,:葡萄糖,1%,,玉米粉,0.6%,,硫酸镁,0.06%,,磷酸氢二钾,0.1%,,酵母粉,0.05%,,,pH 7.0-7.5,,无机磷培养基:葡萄糖,1%,,,(NH,4,),2,SO,4,0.5%,,,NaCl 0.03%,,,KCl 0.03%,,,FeSO,4,·7H,2,O 0.003%,,,MnSO,4,·4H,2,O 0.003%,,,Ca,3,( PO,4,),2,1%,,琼脂,2%,,,pH 7.0-7.5,6,,实验步骤,,配制培养基,分装于,150,或,250,mL,三角瓶,包扎后,,115 ℃,灭菌,20 min,。发酵培养基
5、,A/B/C/D,各,3,瓶。,,接种,接种量,1%,。,,培养,,28 ℃,、,150 rpm,培养,18-24 h.,,测定细胞数量,取发酵液,1,mL,系列稀释,取,0.1,mL,菌液涂布无机磷培养基,,28 ℃,恒温培养,3 d,后计数。,,7,,灭菌培养基无菌度测定,(,1,)显微镜观察法,,利用刚果红染色法可以在显微镜下快速区别死活菌。,,原理:活菌具有排斥染液的能力,而死菌失去了排斥染液的能力,因此,无色透明的是活菌,死菌为蓝色或浅蓝色。,,方法:将待测稀释液与一滴刚果红染色液很薄的均匀涂在载玻片上,风干后滴盐酸,1-2,滴,涂片变蓝,风干后在高倍镜或油镜下观察。,,刚果红溶液:
6、称取刚果红,0.1-0.2 g,,溶于,10 mL,水中。,,盐酸酒精溶液:,95%,酒精,1-2 mL,,蒸馏水,10 mL,,再加入浓盐酸,0.25-0.3 mL,混合即成。,,(,2,)平板培养法,,可取出少量灭过菌的培养基置于,37 ℃,恒温培养箱中培养,24 h,,若无菌生长,即视为灭菌彻底。,8,,磷细菌高密度发酵,菌种:无机磷细菌,,培养基,,种子培养基见讲义第,7,页,,发酵培养基,A,,无机磷培养基见讲义第,7,页,,LB,培养基见讲义第,7,页,,种子制备,,配制种子培养基,分装,100mL/500mL,三角瓶,包扎,,115℃,灭菌,20min,,接种,,28℃,、,150rpm,培养,18-24h,,问题:用于接种发酵罐,接种量,5%,,请问,7L,培养基需要多少菌种用量?,9,,种子接入发酵罐,,种子质量检查,(包括哪些项目?分别用什么方法?),,接种前还需要做什么?,,火圈接种法,,接种后需要做什么?,发酵参数调试稳定,如温度控制系统,空气流速,罐压,,pH,等。,,培养基灭菌质量检查,,10,,发酵控制,,pH,,泡沫,,菌体浓度和形态,,还原糖,,发酵终点,11,,
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