DH10B菌株感受态制备,电击转化及转化效率检测


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1、大肠杆菌DH10B (Streptomycin resistan)电转化感受态制备 1 •从保存的甘油管中取出 200儿菌液到100 mL的LB液体中,37C, 200 rpm 培养约13~16小时后(对数期),按2%接种到SOB培养基中; 2. 37oC,约2~2.5小时后,OD600约0.5左右,取出,冰上缓慢摇育 30 min。 3. 预先4C降温的冷冻离心机离心收集菌体,用预冷的离心管,并时刻保持在 冰上,5000 rpm 离心 5 min ; 4. 用50~60 mL的冰预冷灭菌超纯水洗菌体两次,用枪吸打时一定要轻柔,并 时刻保持在冰上,第二次洗时可以将 2管的菌体并到一
2、管,水洗过程离心的 转速要高一些,约6000 rpm离心5 min,因为离心得不是很实,离心完后要 立即倒掉上清,以免菌体重新悬浮造成损失; 5. 用50 mL的冰预冷灭菌10%甘油洗菌体两次,用枪吸打时一定要轻柔,并时 刻保持在冰上,离心后立即倒掉上清; 6. 最后一次甘油洗涤后立即倒掉上清,视菌体量加入0~x的10%冰预冷甘油 重新悬浮细胞,75~200」L/管,分装到预冷的离心管中,电转化或立即放入 -80C冰箱保存,该感受态可以在-80C保存半年。 SOB培养基(1L): 20 g Tryptone; 5 g Yeast Extract; 0.6 g NaCI; 0.19 g
3、KCl, 8 磅灭菌 20 min。 注意事项: 种子一定要新鲜,最好是从甘油管中直接液体活化的。 OD600控制在0.5左右,建库用的话千万不要过!过了 0.6感受态效率不会太 高,做一般克隆和质粒转化的要求可以适当放低。 菌体时刻保持冰上(4 C以下)!尽量减少离开冰的时间。 最后分装的菌体浓度要浓。 对待菌体要尽量轻柔。 收集菌体用的管和枪头要灭菌,并在超净台操作。 电击转化 1. 75儿的感受态细胞加入TE溶解的质粒和连接产物最好不要超过 0.6」L ,不 然容易击穿,如果质粒是用纯水溶解的可以适当提高,冰上放置 10~30 min; 2. 洗干净并烘干的电转杯冰
4、上预冷,快速将上述感受态细胞转到电转杯里,感 受态细胞要位于杯子底部; 3. 此步骤动作要快:将杯子外壁擦干,2 mm的杯子用电转化程序Ec2, 1 mm 杯子用电转化程序Ec1,电击后立即加入900~1000 JL37C预热的SOC (见分子 克隆),轻柔吸打,转到2 mL的离心管中,37C摇床,150 rpm,45~60 min后 取适量涂平板。 感受态细胞转化效率检测 1.取已知浓度的pUC19质粒(例如0.1 ngA1 L) 0.2 JL到制备好的75 JL感受态 细胞中,按上述方法转化; 2 .转化后取1 JL涂氨苄LB平板,37C过夜; 3 •数平板上的菌落数,转化效率为每微克DNA (即质粒)转化所长出的单菌落 数,即cfu/」g。举例说明:平板上长出750个单菌落,则转化效率=750 cfu -[(0.20.1 ng/儿)-1000]=3.75X 1010 cfu/ 建库用的感受态效率要大于108 cfu/:g DNA。
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